Физиологические особенности резистентности спермы жеребцов к охлаждению с разным антигенным профилем эритроцитов

В статье показаны физиологические особенности жизнеспособности спермы жеребцов при температуре 2‑5°C с разными антигенными особенностями по системам групп крови. Показано, что при наличии антигенов cgm/ceg, ad/dk, cgm/dk, cgm/d, dg/di на эритроцитах D-системы наблюдалась жизнеспособность спермиев не более 50 ч при 2‑5°C. Средняя резистентность сперматозоидов к охлаждению в виде их жизнеспособности спермиев 50‑75 ч при 2‑5°C была установлена у носителей антигенов cegm/cgm, ad/de, cgm/cgm, аd/bcm, bcm/dg, ad/d, cegm/dg, bcm/cgm, bcm/de, cegm/d, de/cgm, cegm/dk, dk/d, de/d, de/dk, cgm/dg, dk/de. Высокая устойчивость спермиев к охлаждению до 2‑5°C в виде жизнеспособности более 75 ч была установлена у лошадей-носителей антигенов bcm/d, bcm/dk, ad/cgm, dg/dk, cgm/de, dg/cgm, dk/dk D-группы крови. В случае наследования подопытными лошадьми а/- антигена К-системы жизнеспособность спермиев увеличилась на 7,24 ч (Р < 0,05), а абсолютная жизнеспособность – на 24,18 усл. ед. (Р < 0,05) по сравнению с отсутствием антигенов этой системы. Отсутствие -/- антигенов на плазмолемме эритроцитов по С-группе крови ассоциируется с повышением (Р < 0,05) жизнеспособности на 10,21 ч и абсолютной выживаемости сперматозоидов на 30,29 усл. ед. относительно эякулятов жеребцов, у которых есть а/- антиген этой эритроцитарной системы. Отсутствие у жеребцов антигенов на поверхности мембран эритроцитов по А-системе -/- или наличие а/- антигена сопровождаются повышением резистентности эякулятов к охлаждению на 14 ч (Р < 0,05) по сравнению с контролем. При этом абсолютная выживаемость сперматозоидов выше (Р < 0,01) контрольных значений на 38,69 и 45,94 усл. ед. соответственно. Наследование жеребцами ad/- антигена сопровождается большей устойчивостью спермиев к охлаждению по сравнению с контролем лишь на 9,63 ч (Р < 0,05) и меньшей резистентностью по сравнению с а/- и -/- на 5 ч. Практическое применение полученных данных заключается в том, что появляется возможность прогнозировать сроки хранения свежеразбавленной охлажденной спермы перед искусственным осеменением. Это особенно важно при длительной транспортировке спермодоз.

1. Лебедева Л.Ф., Атрощенко М.М., Бурмистрова С.А. Основные факторы, влияющие на результативность осеменения кобыл спермой, криоконсервированной по российским и зарубежным технологиям // Сельскохозяйственная биология. 2015. Т. 50, № 4. С. 476-485. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2015.4.476rus

2. Атрощенко М.М., Калашников В.В., Брагина Е.Е., Зайцев А.М. Сравнительное изучение ультраструктуры сперматозоидов в эпидидимальной, эякулированной и криоконсервированной сперме жеребцов // Сельскохозяйственная биология. 2017. Т. 52, № 2. С. 274-281. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.2.274rus

3. Багиров В.А., Калашников В.В., Зайцев А.М., Атрощенко М.М. и др. Репродуктивная функция жеребцов чистокровной арабской породы в зависимости от элементного статуса, оцененного по составу волоса из гривы // Сельскохозяйственная биология. 2017. Т. 52, № 6. С. 1184‑1193. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.6.1184rus

4. Tkachev A.V., Sheremetа V.I., Tkachevа O.L., Rossokha V.I. Physiological relationship of erythrocyne antigens with indicators of horse spermogram. Fiziolohichnyĭ Zhurnal. 2017;63(1):84-90. https://doi.org/10.15407/fz63.01.084

5. Ткачёв А.В., Ткачёва О.Л., Россоха В.И. Ассоциированность эритроцитарных антигенов с характеристиками спермы жеребцов после криоконсервирования // Сельскохозяйственная биология. 2018. Т. 53, № 4. С. 735-742. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.4.735rus

6. Ткачёв А.В., Ткачёва О.Л., Россоха В.И. Цитогенетический статус кобыл украинской верховой породы в связи с оплодотворяемостью // Сельскохозяйственная биология. 2018. Т. 53, № 2. С. 302-308. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.2.302rus

7. Monteiro G.A., Guasti P.N., Hartwig F.P., Dellaqua J.A.Jr., Alvarenga M.A., Papa F.O. Cooling of ejaculated and epididymal stallion sperm. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinaria e Zootecnia. 2013;65(3):681-686. https://doi.org/10.1590/S0102-09352013000300010

8. LeãoFreitas M., Bouéres C., Pignataro T., Gonçalves de Oliveira F., Oliveira Viu M., Oliveira R. Quality of fresh, cooled, and frozen semen from stallions supplemented with antioxidants and fatty acids. Journal of Equine Veterinary Science. 2016;46:1‑6. https://doi.org/10.1016/j.jevs.2016.07.003

9. Stradaioli G., Sylla L., Zelli R., Chiodi P., Monaci M. Effect of L-carnitine administration on the seminal characteristics of oligoasthenospermic stallions. Theriogenology. 2004;62:761-777. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2003.11.018

10. Arruda R.P., Silva D.F., Alonso M.A., Andrade A.F.C., Nascimento J., Gallego A.M. Nutraceuticals in reproduction of bulls and stallions. Revista Brasileira de Zootecnia. 2010;39:393-400. https://doi.org/10.1590/S1516-35982010001300043

11. Шишова Н.В., Комбарова Н.А., Тараховский Ю.С. Холестерин не повышает криозащитную эффективность среды на основе растительных фосфолипидов, используемой для замораживания спермы быка // Сельскохозяйственная биология. 2017. Т. 52, № 2. С. 306-313. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.2.306rus

12. Шаталина О.С. Ассоциации между группами крови и репродуктивными показателями у крупного рогатого скота. Сельскохозяйственная биология. 2018. Т. 53, № 2. С. 309-317. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.2.309rus