Прижизненное исследование гемолимфы красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) при искусственном разведении

Красноклешневого рака начали разводить в индустриальных условиях относительно недавно. Важно контролировать и оценивать физиологическое состояние разводимых объектов и определять критерии оценки, а также референтные значения показателей гемолимфы как циркулирующей жидкости. В приведенных материалах излагаются результаты прижизненного исследования гемолимфы австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus). Определены референтные значения показателей клеточного состава гемолимфы. Выявлен ряд гендерных различий: значение общего числа гемоцитов у самцов выше; доля полугранулоцитов в гемограмме самцов больше, чем у самок, гранулоцитов и ювенильных форм гемоцитов, соответственно, ниже. Полученные результаты могут быть использованы для прижизненной оценки физиологического состояния австралийских красноклешневых раков при выращивании в установках с замкнутым водоиспользованием в индустриальных условиях.

1. Александрова Е.Н. Длиннопалый рак как объект разведения в водоемах бассейна реки Волги // Вестник АГТУ. Серия «Рыбное хозяйство». 2016. № 4. С. 9-17. EDN: XDXTJR

2. Торопов Д.И., Коровин Г.Г., Славнов Б.С., Лавровская Г.Н. и др. Состояние социально-трудовой сферы села и предложения по ее регулированию: Ежегодный доклад по результатам мониторинга 2007 г. Москва: Российский научно-исследовательский институт информации и технико-экономических исследований по инженерно-техническому обеспечению агропромышленного комплекса, 2008. 227 с. EDN: QQAYZN

3. Жигин А.В., Изотова Н.В. Замкнутые системы в аквакультуре – базисная инновация // Вопросы рыбного хозяйства Беларуси. 2015. № 31. С. 52-66. EDN: VCJLZV.

4. Pronina G.I., Koryagina N.Y., Trenkler I.V. Influence of rusty-spotted disease on river crayfish in aquaculture. AACL Bioflux. 2022;15(1):407-414. EDN: HYTQID.

5. Jeyachandran S., Park K., Kwak I.S., Baskaralingam V. Morphological and functional characterization of circulating hemocytes using microscopy techniques. Microscopy Research and Technique. 2020;83(7):736-743. https://doi.org/10.1002/jemt.23463

6. Johansson M.W., Keyser P., Sritunyalucksana K., Söderhäll K. Crustacean haemocytes and haematopoiesis. Aquaculture. 2000;191(1-3):45-52.

7. Пронина Г.И., Корягина Н.Ю., Ревякин А.О. Сравнительная оценка речных раков разных видов по биохимическим и гематологическим показателям // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2009. № 4 (24). С. 186-188. EDN: KYHDLT.

8. Пронина Г.И., Корягина Н.Ю. Референсные значения физиолого-иммунологических показателей гидробионтов разных видов // Вестник Астраханского государственного технического университета. 2015. № 4. С. 103-108. EDN: VDPCLR.

9. Скафарь Д.Н., Шумейко Д.В. Гемоциты австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus): морфология и гемограмма // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 2022. Т. 58, № 6. С. 507-519. https://doi.org/10.31857/S0044452922060109

10. Ширина Ю.М., Файзулина Д.Р., Конькова А.В., Котельников А.В. и др. Перспективы использования муки из люцерны в составе кормов для австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия «Рыбное хозяйство». 2023. № 1. С. 72-81. https://doi.org/10.24143/2073-5529-2023-1-72-81