Морфологическая и функциональная характеристика лимфоидной ткани среднего отдела кишечника осетровых видов рыб на примере стерляди (Acipenser ruthenus)

В работе приведены результаты изучения гистологического строения и качественного состава клеточных элементов гемопоэтической ткани, ассоциированной со средним отделом кишечника стерляди (Acipenser ruthenus). Показано, что лимфоидная ткань кишечника стерляди включает в себя островки лимфоидной ткани, ограниченные ретикулярной тканью/слизистой оболочкой, а также лимфоциты, ассоциированные со слизистой оболочкой (интраэпителиальные) и с собственной пластиной слизистой кишечника (лимфоциты lamina propria). Дополнительно в ткани обнаружены эозинофильные клетки. В слизистой оболочке кишечника наиболее встречаемым типом клеток являлись интраэпителиальные лимфоциты (8,9 кл/100 мкм) и лимфоциты lamina propria (7,1 кл/100 мкм). На мазках лимфоидной ткани кишечника стерляди были обнаружены следующие типы клеток лимфоидного ряда (в порядке убывания): лимфоциты (64,4%), пролимфоциты (6,5%), плазмоциты (3,9%), лимфобласты (2,9%) и проплазмоциты (1,5%). Морфометрические изменения в ряду лимфатических клеток на мазках лимфоидной ткани выражались в уменьшении размеров ядра и цитоплазмы. Морфология, качественный состав клеток, а также функциональных характеристик позволили отнести лимфоидную ткань кишечника стерляди к кишечно-ассоциированной лимфоидной ткани. Полученные результаты могут быть использованы для оценки иммунного статуса культивируемых рыб, определения эффективности иммуномодулирующих кормов и кормовых добавок, для мониторинга и диагностики диких популяций рыб, а также могут способствовать пониманию эволюции лучеперых рыб.

1. Birstein V.J., Waldman J.R., Bemis W.E. Sturgeon biodiversity and conservation. Springer Science & Business Media. 1997;17:443. https://doi.org/10.1007/0-306-46854-9_2

2. Грушко М.П., Светашева Д.Р. Сравнительная морфофизиологическая характеристика органов кроветворения осетровых рыб и земноводных на ранних стадиях развития // Труды ВНИРО. 2017. Т. 167. С. 12-23. EDN: ZRQSZX

3. Gradil A.M., Wright G.M., Wadowska D.W., Fast M.D. Ontogeny of the immune system in Acipenserid juveniles. Developmental & Comparative Immunology. 2014;44(2):303-314. https://doi.org/10.1016/j.dci.2014.01.006

4. Höhne C., Prokopov D., Kuhl H., Du K. et al. The immune system of sturgeons and paddlefish (Acipenseriformes): a review with new data from a chromosome scale sturgeon genome. Reviews in Aquaculture. 2021;13(3):1709-1729. https://doi.org/10.1111/raq.12542

5. Минеев А.К. Гематопатологии у рыб Куйбышевского водохранилища // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. 2016. Т. 18, № 5-1. С. 51-59. EDN: YJKQIR

6. Флёрова Е.А., Богданова А.А., Паюта А.А., Евдокимов Е.Г. и др. Гематологические показатели рыб малых рек государственного природного заказника «Ярославский» // Труды ВНИРО. 2020. Т. 179. С. 78-89. https://doi.org/10.36038/2307-3497-2020-179-78-89

7. Witeska M., Kondera E., Bojarski B. Hematological and hematopoietic analysis in fish toxicology – a review. Animals. 2023;13(16):2625. https://doi.org/10.3390/ani13162625

8. Alijagic A., Suljevic D. Hemopoiesis in the pronephros of tench, Tinca tinca, Linnaeus 1758 (Teleostei, Cyprinidae): cytochemical identification and cell morphology. Turkish Journal of Veterinary & Animal Sciences. 2016;40(5):548-553. https://doi.org/10.3906/vet-1512-34

9. Liu Y., Xiao Q., Yang S., Zhao L. et al. Characterization of hematopoiesis in Dabry’s sturgeon (Acipenser dabryanus). Aquaculture and fisheries. 2017;2(6):262-268. https://doi.org/10.1016/j.aaf.2017.10.007

10. Грушко М.П. Морфофизиологические особенности кроветворения у костистых рыб (на примере воблы (Rutilus rutilus caspicus)) // Вопросы рыболовства. 2010. Т. 11, № 2. С. 327-340. EDN: MSNXTJ

11. Грушко М.П., Федорова Н.Н. Структурная и функциональная организация органов гемопоэза костистых рыб (на примере воблы) // Нефтегазовые технологии и экологическая безопасность. 2008. № 3. С. 61-64. EDN: ISCRBN

12. Валова В.Н. Реакция периферической крови и пищеварительной системы сеголеток амурского осетра на условия зимовки в садках тепловодного хозяйства // Известия ТИНРО (Тихоокеанского научно-исследовательского рыбохозяйственного центра). 2013. Т. 173. С. 259-268. EDN: RMTXIF

13. Wilson J.M., Castro L.F.C. Morphological diversity of the gastrointestinal tract in fishes. Fish physiology. Academic Press. 2010;30:1-55. https://doi.org/10.1016/S1546-5098(10)03001-3

14. Ложниченко О.В., Загрийчук В.П., Грицишина В.В. Оценка воздействия гормональных добавок на органы пищеварительной системы русского осетра // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия «Рыбное хозяйство». 2009. № 2. С. 54-59. EDN: MWIDJZ

15. Гаврилин К.В. Гистопатология костистых рыб: Монография. Курск: ИП Бескровный А.А, 2023. 200 с. EDN: JICTCN

16. Suvarna S.K., Layton C., Bancroft J.D. Bancroft’s Theory and Practice of Histological Techniques E-Book. Elsevier Health Sciences: Amsterdam, The Netherlands, 2018:672. URL: https://shop.elsevier.com/books/bancrofts-theory-and-practice-of-histological-techniques/suvarna/978-0-7020-6864-5 (дата обращения: 01.12. 2024).

17. Schindelin J., Arganda-Carreras I., Frise E., Kaynig V. et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 2012;9(7):676-682. https://doi.org/10.1038/nmeth.2019

18. Кочетков Н.И., Никифоров-Никишин Д.Л., Смородинская С.В., Климчук А.А. и др. Положительный опыт применения штамма Lactobacillus brevis 47f на рыбоводно-биологические, гематологические и гистологические показатели молоди стерляди (Acipenser ruthenus) // Рыбное хозяйство. 2024. № 4. С. 96-107. https://doi.org/10.36038/0131-6184-2024-4-96-107

19. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб: сравнительная морфология и классификация форменных элементов крови рыб. М.: Изд-во «Легкая и пищевая промышленность», 1983. 283 с.

20. Kondera E. Haematopoiesis in the head kidney of common carp (Cyprinus carpio L.): a morphological study. Fish Physiology and Biochemistry. 2011;37:355-362. https://doi.org/10.1007/s10695-010-9432-5

21. Fijan N. Morphogenesis of blood cell lineages in channel catfish. Journal of Fish Biology. 2002;60(4):999-1014. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2002.tb02424.x

22. Collan Y., Torkkeli T., Pesonen E., Jantunen E. et al. Application of morphometry in tumor pathology. Analytical and Quantitative Cytology and Histology. 1987;9(2):79-88. https://doi.org/10.1007/978-3-642-74823-3_6

23. Mitchell C.D., Criscitiello M.F. Comparative study of cartilaginous fish divulges insights into the early evolution of primary, secondary and mucosal lymphoid tissue architecture. Fish & Shellfish Immunology. 2020;107:435-443. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2020.11.006

24. Yu Y., Wang Q., Huang Z., Ding L. et al. Immunoglobulins, mucosal immunity and vaccination in teleost fish. Frontiers in Immunology. 2020;11:567941. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.567941

25. Smorodinskaya S., Kochetkov N., Gavrilin K., Nikiforov-Nikishin D. et al. The Effects of Acute Bisphenol A Toxicity on the Hematological Parameters, Hematopoiesis, and Kidney Histology of Zebrafish (Danio rerio). Animals. 2023;13(23):3685. https://doi.org/10.3390/ani13233685

26. Фомина А.С. Клеточный состав головного отдела почки байкальского омуля (Coregonus migratorius) в период нагула и нерестовой миграции // Вестник АПК Верхневолжья. 2016. № 3. С. 71-74. EDN: WWJNBR

27. Fournier-Betz V., Quentel C., Lamour F., LeVen A. (Immunocytochemical detection of Ig-positive cells in blood, lymphoid organs and the gut associated lymphoid tissue of the turbot (Scophthalmus maximus). Fish & Shellfish Immunology. 2000;10(2):187-202. https://doi.org/10.1006/fsim.1999.0235

28. Cui Z.W., Zhang X.Y., Wu C.S., Zhang Y.A. et al. Membrane IgM+ plasma cells in grass carp (Ctenopharyngodon idella): Insights into the conserved evolution of IgM+ plasma cells in vertebrates. Developmental & Comparative Immunology. 2020;106:103613. https://doi.org/10.1016/j.dci.2020.103613