Влияние неравномерности микроклимата в птичниках на респираторную систему сельскохозяйственной птицы

Дыхательная система птиц максимально приспособлена к высокой эффективности воздухообмена, необходимого для поддержания повышенного уровня обменных процессов. Слизь дыхательных путей играет важную роль в мукоцилиарном клиренсе. При нормальном состоянии дыхательной системы, без аллергических и воспалительных реакций увеличение количества слизи и структур, которые ее производят, может интерпретироваться как положительный факт, но слишком большое количество слизи может быть ответом на раздражение слизистой и способствует обструкции дыхательных путей. В результате двух исследований, повторяющих друг друга, подтверждена зависимость состояния стенки трахеи у бройлеров кросса Ross-308 от циркуляции воздуха в производственных помещениях. Обеспечение циркуляции воздушных потоков в залах выращивания птицы положительно влияет на гистологическую и гистохимическую структуру трахеи. В первом опыте об этом достоверно свидетельствует увеличение толщины эпителиального слоя в 1,3 раза (на 23,3%) и высоты ресничек в 3,1 раза (на 67,5%). Во втором опыте это подтверждается увеличением высоты эпителия на 40% и высоты слоя ресничек на 70%. Кроме того, гистологическая картина слизистой соответствует норме, отсутствуют нарушения целостности эпителия, реснички ровные, без деформаций и заломов. С обеспечением циркуляции воздушных потоков в закрытых помещениях в первом опыте толщина слизистой оболочки трахеи уменьшается в 2,6 раза (на 61,9%), а толщина собственной пластинки – в 2,9 раза (на 65,4%). Во втором опыте такая закономерность в собственной пластинке не обнаружена, но деструктивные изменения слизистой оболочки трахеи, увеличение количества гликопротеидов и протеогликанов в опытных группах подтверждают влияние фактора вентиляции.

1. Carvalho O., Gonçalves C. Comparative physiology of the respiratory system in the animal kingdom // The Open Biology Journal. – 2011. – V. 4. – Pp. 35–46. doi: 10.2174/1874196701104010035.

2. Maina J. Pivotal debates and controversies on the structure and function of the avian respiratory system: setting the record straight // Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. – 2017. – № 92 (3). – Pp. 1475–1504. doi: 0.1111/brv.12292.

3. Duncker H.R. Structure of the avian lung // Respir Physiol. – 1972. – № 14. – Рр. 4–63. doi: 10.1016/ 0034–5687(72)90016–3.

4. Kim K.C., McCracken K., Lee B.C., Shin C.Y. et al. Airway goblet cell mucin: its structure and regulation of secretion // Eur Respir J. – 1997. – № 10. – Рр. 2644–2649.

5. Verdugo P. Goblet cells secretion and mucogenesis // Ann. Rev. Physiol. – 1990. – V. 52. – Pp. 157–176. doi: 10.1146/annurev.ph.52.030190.001105.

6. Fuloria M., Rubin B. Evaluating the efficacy of mucoactive aerosol therapy // Resp. Care. – 2000. – V. 45 (7). – Pp. 868–873.

7. Rose M., Nickola T.J., Voynow J. Airway mucus obstruction: mucin glycoproteins, MUC gene regulation and goblet cell hyperplasia // Am J Respir Cell Mol Biol. – 2001. – № 25. – Рр. 533–537.

8. Boek W.М., Romeijn S.G., Graamans K., Verhoef J., Merkus F., Huizing E. Validation of animal experiments on ciliary function in vitro. I. The influence of substances used clinically // Acta Oto-Laryngol. – 1999. – № 119 (1). – Рр. 93–97. doi: 10.1080/00016489950182016.

9. Fan X., Liu S., Liu G., Zhao J., Jiao H., Wang X., Song Z., Lin H. Vitamin A Deficiency Impairs Mucin Expression and Suppresses the Mucosal Immune Function of the Respiratory Tract in Chicks // PLoS One. – 2015. – V. 10 (9). doi: 10.1371/journal.pone.0139131.

10. Aydelotte M. The effects of vitamin A and citral on epithelial differentiation in vitro. 1. The chick tracheal epithelium // J Embryol Exp Morphol. – 1963. – № 11. – Рр. 279–291.

11. Kallapura G., Morgan M.J., Pumford N.R., Bielke L.R., Wolfenden A.D., Faulkner O.B. et al. Evaluation of the respiratory route as a viable portal of entry for Salmonella in poultry via intratracheal challenge of Salmonella Enteritidis and Salmonella Typhimurium // Poult Sci. – 2014. – № 93. – Рр. 340–346. doi: 10.3382/ps.2013–03602.

12. Минков В. Выращивание бройлеров: типовые проблемы и их решение // Zhivotnovodstvo Rossii. – 2018. – № 3. – Pp. 50–52.

13. Микроскопическая техника. Учебно-методич. Пособие / Сост. Саркисова Д.С., Перова Ю.П. – Mосква. – 1996. – 544 с.

14. Maina J., Abdalla M.F., King A.S. Light microscopic morphometry of the lung of 19 avian species // Acta Anat (Basel). – 1982. – № 112 (3). – Рр. 264–270. doi: 10.1159/000145519. PMID: 7102251.

15. Prosekova E.А., Panov V.P., Semak A.E. Development of goblet intestinal cells of broilers in case of introducing Bacillus subtilis spores Into the diet // International Journal of Ecosystems and Ecology Science. – 2022. – V. 12. – № 3. – Pр. 333–338. doi:10.31407/ijees12.341.

16. Seryakova A., Prosekova E., Panov V. et al. The Effects of Feed Additive Containing Ellagitannins of Sweet Chestnut on the Intestinal Morphology in Broilers // Fundamental and Applied Scientific Research in the Development of Agriculture in the Far East: Agricultural Innovation Systems. – 2022. – Pр. 956–963. doi:10.1007/978–3–030–91405–9_108.

17. Фисинин В.И., Салеева И.П., Османян А.К. и др. Гистоструктура трахеальной стенки у цыплят-бройлеров в зависимости от условий циркуляции воздуха в закрытых помещениях // Сельскохозяйственная биология. – 2021. – Т. 56, № 4. – С. 782–794. doi: 10.15389/agrobiology.2021.4.782rus.

18. Османян А.К., Малородов В.В., Черепанова Н.Г., Салеева И.П. Состояние реснитчатого эпителия трахеи бройлеров как индикатор воздухообмена в птичниках // Птицеводство. – 2020. – № 12. – С. 42–46. doi: 10. 33845/0033–3239–2020–69–12–42–46.

19. Zhou Y., Liu Q.X., Li X.M., Ma D.D., Xing S., Feng J.H., Zhang M.H. Effects of ammonia exposure on growth performance and cytokines in the serum, trachea, and ileum of broilers // Poult Sci. – 2020. – V. 99 (5). – Рр. 2485–2493. doi: 10.1016/j.psj.2019.12.063.

20. Waad S. Comparative histological study of trachea in guinea fowl and coot bird // Basrah Journal of Veterinary research. – 2015. – V. 14 (2). – Рр. 122–128.